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    蒂科生物2018春季血清* WB標準protocol

    2018-03-21 瀏覽次數:1265

    蒂科生物2018春季血清*  WB標準protocol

    蒂科生物2018春季血清*成功完成Western Blot檢測,必須滿足4個條件:

    1凝膠洗脫:轉移期間蛋白質必須從凝膠中洗脫出來,如果蛋白質還截留在凝膠中,將無法在膜上進行分析

    2吸附到膜上:在轉移過程中蛋白質必須吸附到膜上,如果蛋白不吸附,將無法在膜上進行分析

    3處理期間仍截留在膜上:在轉移后的處理過程中蛋白質必須保持吸附在印跡膜上

    4處理過程中可接近:被吸附的蛋白質必須能夠與檢測試劑接觸,如果蛋白質被掩蓋則無法檢測

    蒂科生物2018春季血清*,成功進行WB檢測,則設置合適正確的對照是*的,只要正確設置了這些對照,即可快速和準確的找到WB的問題所在,并保證實驗結果的準確性和特異性!一般需要設置的對照如下:

    l  陽性對照:明確表達檢測蛋白的組織或細胞,用于檢測抗體的工作效率

    l  陰性對照:明確不表達檢測蛋白組織或細胞,用于檢測抗體的特異性

    l  二抗對照:不加一抗,用于檢測二抗的特異性

    l  內參對照:檢測標本的質量和二抗系統

    l  空白對照:不加一抗和二抗;用于檢測膜的性質和封閉的效果

    蒂科生物2018春季血清*,WB檢測基本過程

    1、獲取細胞或組織裂解物

    1)根據檢測蛋白的位置選擇合適的裂解buffer

    蛋白位置

    推薦buffer

    全細胞

    NP-40 or RIPA

    胞漿(可溶性蛋白)

    Tris-HCl

    胞漿(骨架結合蛋白)

    Tris-Triton

    膜蛋白

    NP-40 or RIPA

    核蛋白

    RIPA or 核蛋白提取試劑盒

    線粒體蛋白

    RIPA or 線粒體分離試劑盒

    亦可購買商業化的蛋白提取試劑盒來保證標本制備的質量

    2)選擇合適的蛋白酶抑制劑,避免蛋白降解,從而保證檢測的準確性!

    2、蛋白定量

    常用的蛋白定量方法:Bradford assay,Lowry assay BCA assay。定量后,可根據情況將標本保存在-20°C /-80°C備用,進行免疫沉淀(IP)或者直接進行電泳分離蛋白

    3、電泳分離蛋白質

    蒂科生物2018春季血清*,根據待測蛋白狀態確定電泳條件:

    待測蛋白狀態

    凝膠條件

    上樣buffer

    電泳buffer

    Reduced - Denatured

    還原,變性

    β-巰基乙醇或DTT,含SDS

    SDS

    Reduced - Native

    還原,不變性

    β-巰基乙醇或DTT,不含SDS

    不含SDS

    Oxidized - Denatured

    不還原,變性

    不含β-巰基乙醇或DTT,含SDS

    SDS

    Oxidized - Native

    不還原,不變性

    不含β-巰基乙醇或DTT,不含SDS

    不含SDS

    根據待測蛋白分子量大小確定凝膠濃度

    蛋白分子量(kDa

    凝膠濃度(%)

    4-40

    20

    12-45

    15

    10-70

    12.5

    15-100

    10

    25-200

    8

    4、轉膜

    根據不同的檢測目的和待測蛋白的特性,選擇合適的膜類型。常用的轉移膜類型有:PVDF膜、硝酸纖維素膜(NC膜)和尼龍膜,其中PVDFNC膜的使用頻率zui高。各種膜的技術參數及比較如下:

     

    PVDF

    NC

    尼龍膜

    靈敏度和分辨率

    背景

    較高

    蛋白結合能力

    100-200ug/cm2(適用于SDS存在時與蛋白結合)

    80-100ug/cm2

    >400ug/cm2

    機械強度

    干的膜易脆

    軟而結實

    溶劑抗性

    使用前是否需要浸潤

    100%甲醛潤濕

    緩沖液潤濕

    緩沖液潤濕

    適用染色方法

    膠體金、麗春紅、酰胺黑、印度墨汁、考馬斯亮蘭

    膠體金、麗春紅、酰胺黑、印度墨汁

    不能用陰離子染料

    適用檢測方法

    顯色法、化學發光、熒光、放射性、化學熒光、快速免疫檢測

    顯色法、化學發光、熒光、放射性

    顯色、化學發光、放射性

    適用范圍

    普通蛋白WB、糖蛋白檢測、蛋白質測序、氨基酸分析、重復檢測

    普通蛋白WB、氨基酸分析、重復檢測。0.1um膜適用于7kDa以下蛋白

    低濃度小分子蛋白、酸性蛋白、糖蛋白、蛋白多糖、核酸檢測常用

    價格

    較低

    5、封閉

    去掉膜上多余的非特異性結合位點,降低背景。常用的封閉溶液有:含BSA或者脫脂奶粉的TBSTTBS

    6、一抗孵育

    一抗的選擇成功與否,是整個WB實驗成功的關鍵:選擇一抗有以下幾個注意點:

    l  選擇適合檢測標本種屬的一抗(說明書有驗證)

    l  選擇適用于WB實驗方法的一抗(說明書有驗證)

    l  選擇單克隆抗體或者經過親和純化的多克隆抗體

    一抗的保存和使用:

    l  根據說明書的要求條件進行抗體的保存;一般需要將抗體分裝后放入-20度保存,避免反復凍融。

    l  抗體的工作液現配現用,在4度保存不要超過2

    l  根據說明書推薦濃度使用TBST稀釋一抗。由于實驗室條件和檢測方法等的差異,說明書推薦的稀釋比例只作參考,需要在說明書推薦的濃度周邊進行多個濃度梯度的實驗檢測,然后選擇信噪比的抗體濃度進行實驗。如果說明書沒有推薦濃度,可進行多個稀釋比例進行摸索*稀釋度(1:100-1:3000)。

    l  孵育條件:推薦4°C孵育過夜(一般大于18個小時),根據抗體親和力不同孵育時間有所區別

    7、二抗孵育

    根據說明書推薦濃度使用TBST稀釋一抗。如果說明書沒有推薦濃度,可進行多個稀釋比例進行摸索*稀釋度(1:1000-1:20000)。孵育條件一般為室溫1-2小時

    8、底物孵育

    選擇顯色或者化學發光底物。一般傾向于化學發光,靈敏度高且背景低,節省抗體用量

    9、結果分析和檢測

    凝膠成像系統檢測或者暗室曝光到膠片

    Note:從封閉開始,每步之間都需要用TBST進行洗滌,3次,每次5min

    蒂科生物2018春季血清*,WB技術要點和常見問題分析

    WB過程中常見的問題及可能原因分析

    問題

    可能原因

    驗證或解決辦法

    轉膜不充分

    膜沒有*均勻濕透

    使用100% methanol浸透膜

    靶蛋白分子量小于10,000

    選擇小孔徑的膜,縮短轉移時間

    靶蛋白等電點等于或接近轉移緩沖液pH

    可嘗試使用其他緩沖液如CAPS緩沖液(pH 10.5)或使用低pH值緩沖液如乙酸緩沖液

    甲醇濃度過高

    過高甲醇濃度會導致蛋白質與SDS分離,從而沉淀在凝膠中,同時會使凝膠收縮或變硬,從而抑制高分子量蛋白的轉移。降低甲醇濃度或者使用乙醇或異丙醇代替

    轉移時間不夠Thick gel

    對于厚的膠以及高分子量蛋白需要延長轉移時間

    背景高

    膜沒有*均勻濕透

    使用100% methanol浸透膜

    洗膜不充分

    增加洗液體積和洗滌次數

    阻斷不充分

    增加封閉液孵育時間,或者提高溫度。選擇合適的封閉試劑(脫脂奶粉,BSA,酪蛋白等)

    二抗濃度過高

    降低二抗濃度

    檢測過程中膜干燥

    保證充分的反應液,避免出現干膜現象

    曝光過度

    縮短曝光時間

    抗體與阻斷蛋白有交叉反應

    檢測抗體與阻斷蛋白的交叉反應性,選擇無交叉反應的封閉劑。洗滌液中加入Tween-20可減少交叉反應

    沒有陽性條帶

    抗體染色不充分

    增加抗體濃度,延長孵育時間

    酶失活

    直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物

    標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低

    設置陽性對照,如果陽性對照有結果,但標本沒有則可能是標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低。可考慮增加標本上樣量解決靶蛋白含量低的原因。

    試劑不匹配

    一抗與組織種屬,一抗與二抗或/和底物與酶系統之間不匹配。通過設置內參照可以驗證二級檢測系統的有效性

    一抗失效

    選擇在有效期內抗體;并選擇現配現用的工作液

    HRP抑制劑

    所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

    有陽性條帶,但條帶比較弱

    抗體染色不充分

    增加抗體濃度,延長孵育時間

    酶活性降低

    直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物

    標本中靶蛋白含量太低

    增加標本上樣量。

    洗膜過度

    縮短洗滌時間

    HRP抑制劑

    所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

    抗體活性降低

    選擇在有效期內的抗體,工作液現配現用,避免長時間放置

    蛋白轉移不充分

    見上述

    封閉過度

    減少封閉劑的量或縮短時間;換用不同封閉劑類型

    曝光時間過短

    延長曝光時間

    HRP抑制劑

    所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

    條帶位置(大小)不對;或有非特異性條帶

    二抗的非特異性結合

    增加一個對照:不加一抗,其他操作過程不變,即可驗證背景是否由二抗系統來源。選擇其他二抗(特異性更強的,只針對重鏈的)

    一抗的特異性不夠

    使用單克隆或者親和純化的抗體,保證抗體的特異性

    蛋白降解

    使用新鮮制備的標本,并使用蛋白酶抑制劑

    二聚體或多聚體存在

    增加蛋白質變性過程及強度

    抗體濃度過高

    降低抗體(一抗、二抗)濃度,可以減少非特異性條帶

    蛋白上樣量過大

    降低上樣量

    背景有斑點

    封閉劑中有聚集體

    使用前過濾封閉試劑

    HRP耦聯二抗中有聚集體

    過濾二抗試劑,去除聚集體

    膜上出現反像(暗背景上白色帶)

    HRP含量過高

    降低酶聯二抗的濃度

     

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